[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
بانک ها و نمایه نامه ها::
فرم پیش نیاز ارسال مقاله::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
بانک ها و نمایه ها
DOAJ
GOOGLE SCHOLAR
..
:: دوره 28، شماره 6 - ( 9-1402 ) ::
جلد 28 شماره 6 صفحات 794-775 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیر نانوپلیمر قالب مولکولی ـ نانوذرات اکسید روی(Zn) آغشته شده به اسانس مرزه خوزستانی بر میزان بیان ژن lasR در جدایه‌های بالینی پسودوموناس آئروژینوزا: یک مطالعه آزمایشگاهی
محسن عزیزی1 ، نیما بهادر 2، اصغر شریفی3
1- گروه میکروبیولوژی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
2- گروه میکروبیولوژی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران ، bahador@iaushiraz.ac.ir
3- مرکز تحقیقات سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم‌پزشکی یاسوج، یاسوج، ایران
چکیده:   (676 مشاهده)
زمینه و هدف: در این مطالعه، به عنوان یک زمینه پژوهشی، بررسی کاربرد نانوذرات و گیاهان دارویی در درمان بیماری‌های ناشی از پسودموناس آئیروژینوزا مورد بررسی قرار گرفت. هدف از این مطالعه تعیین و تأثیر نانوذره روی(Zn) آغشته شده به اسانس مرزه خوزستانی((Satureja khuzestanica بر میزان بیان ژن lasR در جدایه‌های بالینی پسودوموناس آئروژینوزا تشکیل دهنده بیوفیلم در شرایط برون تنی بود.

روش بررسی: این یک مطالعه تجربی می‌باشد که در سال 1399 بر روی 150 نمونه بالینی مشکوک به پسودموناس آئروژینوزا غیر تکراری و متناوب که از نمونه‌های پوست، خون و ادرار بیماران بستری در بخش‌های مختلف بیمارستان امام سجاد (ع) شهر یاسوج جمع‌آوری شد، انجام گرفت. پس از ورود 4 سویه بالینی به همراه یک سویه استاندارد پسودوموناس آئروژینوزا   (ATCC 25922)به عنوان نمونه، اسانس مرزه‌خوزستانی از شرکت دارویی باریج اسانس(کاشان، ایران) تهیه شد. سپس، پس از تعیین هویت نمونه‌ پسودوموناس آئروژینوزا جدا شده از بیماران،  PCRجهت تأیید حضور ژنlasR  و ژن DNA gyrase A ، تعیین الگوی حساسیت آنتی‌بیوتیکی، آزمون میکرودایلوشن براث، رقیق‌سازی چکربورد، آزمون آگار برای تعیین حداقل غلظت کشندگی، بررسی بیان ژنlasR  با Real time PCR، در شرایط آزمایشگاهی مورد ارزیابی قرار گرفتند. داده‌های جمع‌آوری شده بر استفاه از آزمون‌های آماری من ویتنی، تی و تی جفت نمونه‌ای تجزیه و تحلیل شدند.

یافته‌ها: با توجه به نتایج الگوی حساسیت آنتی‌بیوتیکی، بیشترین مقاومت مربوط به آمیکاسین(30 میکروگرم)، کولیسین(10 میکروگرم) و سیپروفلوکسازین(5 میکروگرم) بود و کمترین مقاومت مربوط به سفتازیدین(30 میکروگرم)، و ایمی پنم(10 میکروگرم)، بود. هم‌چنین، اسانس مرزه‌خوزستانی و نانوذرات اکسید روی در برابر سویه استاندارد و جدایه‌های بالینی، دارای حداقل غلظت مهاری(256ـ512 میکروگرم/میلی لیتر) بودند. حد شاخص غلظت مهاری نسبی(FIC) برابر عدد 1 شد که نماینگر اثر افزایش است. هم‌چنین، حداقل غلظت باکتری‌کشی(MBC) چهار برابر حداقل غلظت مهاری(MIC) بود. بالاترین MIC، مربوط به نانوذرات اکسید روی و کمترین آن مربوط به استفاده هم‌زمان اسانس و نانوذره شد. در حالت ترکیبی تیمارها، به نصف غلظت MIC تیمارهای مجزا، نیاز بود. هم‌چنین، با کاهش اثر مهار کنندگی تیمارهای مورد مطالعه، تولید بیوفیلم افزایش یافت. میزان بیان ژن lasR در غلظت MIC انواع تیمارهای مطالعه متفاوت بود؛ کم‌ترین میزان بیان ژن lasR در غلظت MIC به هر یک از تیمارها به تنهایی و بیشترین به استفاده همزمان تیمارها اختصاص داشت.

نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد که سویه‌های بالینی به برخی از آنتی‌بیوتیک‌ها بسیار مقاوم بودند، اما به برخی دیگر حساس بودند. هم‌چنین، ترکیبات اسانس گیاه مرزه خوزستانی شناسایی و تجزیه شدند. اصلی‌ترین ترکیب این اسانس کارواکرول بود که خاصیت ضدعفونی کننده دارد. با استفاده از FT-IR، گروه‌های عاملی پلیمر قالب مولکولی و اسانس شناسایی شدند. نتایج نشان داد که ترکیب اسانس و نانوپلیمر روی به‌صورت جداگانه منجر به کاهش بیان ژن lasR در سویه‌های بالینی می‌شوند. با ترکیب این دو تیمار، تأثیر کاهش بیان ژن lasR قوی‌تر و اثربخش‌تر می‌شود.

 
واژه‌های کلیدی: پسودوموناس آئروژینوزا، نانوذره‌ روی، اسانس مرزه‌خوزستانی، lasR، بیوفیلم
متن کامل [PDF 944 kb]   (169 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: میکروبیولوژی
دریافت: 1402/5/1 | پذیرش: 1402/9/19 | انتشار: 1402/9/19
فهرست منابع
1. Motbainor H, Bereded F, Mulu W. Multi-drug resistance of blood stream, urinary tract and surgical site nosocomial infections of Acinetobacter baumannii and Pseudomonas aeruginosa among patients hospitalized at Felegehiwot referral hospital, Northwest Ethiopia: a cross-sectional study. BMC Infectious Diseases 2020; 20(1): 92.## [DOI:10.1186/s12879-020-4811-8] [PMID] []
2. Salomoni R, Léo P, Montemor A, Rinaldi B, Rodrigues M. Antibacterial effect of silver nanoparticles in Pseudomonas aeruginosa. Nanotechnology, Science and Applications 2017; 10: 1-15. ## [DOI:10.2147/NSA.S133415] [PMID] []
3. Silva A, Silva V, Igrejas G, Poeta P. Carbapenems and Pseudomonas aeruginosa: mechanisms and epidemiology. Antibiotics and Antimicrobial Resistance Genes in the Environment: Elsevier; 2020; 253-68. ## [DOI:10.1016/B978-0-12-818882-8.00017-6]
4. Lund-Palau H, Turnbull AR, Bush A, Bardin E, Cameron L, Soren O, et al. Pseudomonas aeruginosa infection in cystic fibrosis: pathophysiological mechanisms and therapeutic approaches. Expert Review of Respiratory Medicine 2016; 10(6): 685-97. ## [DOI:10.1080/17476348.2016.1177460] [PMID]
5. Alhussain FA, Yenugadhati N, Al Eidan FA, Al Johani S, Badri M. Risk factors, antimicrobial susceptibility pattern and patient outcomes of Pseudomonas aeruginosa infection: A matched case-control study. Journal of Infection and Public Health 2021; 14(1): 152-7. ## [DOI:10.1016/j.jiph.2020.11.010] [PMID]
6. Torres M, Gómez S, Galindo R, Vargas J. Multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa infection of central venous catheter in a patient with kdigo v chronic kidney disease receiving hemodialysis treatment: a case report and literature review. J Clin Case Rep 2018; 8(1153): 2. ##
7. Kumar R, Chhibber S, Gupta V, Harjai K. Screening & profiling of quorum sensing signal molecules in Pseudomonas aeruginosa isolates from catheterized urinary tract infection patients. The Indian Journal of Medical Research 2011; 134(2): 208. ##
8. Senturk S, Ulusoy S, Bosgelmez-Tinaz G, Yagci A. Quorum sensing and virulence of Pseudomonas aeruginosa during urinary tract infections. The Journal of Infection in Developing Countries 2012; 6(06): 501-7. ## [DOI:10.3855/jidc.2543] [PMID]
9. Gellatly SL, Hancock RE. Pseudomonas aeruginosa: new insights into pathogenesis and host defenses. Pathogens and Disease 2013; 67(3): 159-73. ## [DOI:10.1111/2049-632X.12033] [PMID]
10. Tapia-Rodriguez MR, Hernandez-Mendoza A, Gonzalez-Aguilar GA, Martinez-Tellez MA, Martins CM, Ayala-Zavala JF. Carvacrol as potential quorum sensing inhibitor of Pseudomonas aeruginosa and biofilm production on stainless steel surfaces. Food Control 2017; 75: 255-61. ## [DOI:10.1016/j.foodcont.2016.12.014]
11. Burt SA, Ojo-Fakunle VT, Woertman J, Veldhuizen EJ. The natural antimicrobial carvacrol inhibits quorum sensing in Chromobacterium violaceum and reduces bacterial biofilm formation at sub-lethal concentrations. PLoS One 2014; 9(4): e93414. ## [DOI:10.1371/journal.pone.0093414] [PMID] []
12. Burt S. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods-a review. International Journal of Food Microbiology 2004; 94(3): 223-53. ## [DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2004.03.022] [PMID]
13. Esmaeili D. The Study of Inhibition Effects Satureja khuzestaniea Essence against Gene Expression bap Acinetobacter baumannii with Real time PCR Technique. Iran J Med Microbiol 2015; 9(1); 313. ##
14. Agarwal H, Menon S, Kumar SV, Rajeshkumar S. Mechanistic study on antibacterial action of zinc oxide nanoparticles synthesized using green route. Chemico-biological Interactions 2018; 286: 60-70. [DOI:10.1016/j.cbi.2018.03.008] [PMID]
15. Fouda A, Saad E, Salem SS, Shaheen TI. In-Vitro cytotoxicity, antibacterial, and UV protection properties of the biosynthesized Zinc oxide nanoparticles for medical textile applications. Microbial Pathogenesis 2018; 125: 252-61. ## [DOI:10.1016/j.micpath.2018.09.030] [PMID]
16. Jin SE, Jin HE. Antimicrobial activity of zinc oxide nano/microparticles and their combinations against pathogenic microorganisms for biomedical applications: From physicochemical characteristics to pharmacological aspects. Nanomaterials 2021; 11(2): 263. ## [DOI:10.3390/nano11020263] [PMID] []
17. Seil JT, Webster TJ. Antibacterial effect of zinc oxide nanoparticles combined with ultrasound. Nanotechnology 2012; 23(49): 495101. ## [DOI:10.1088/0957-4484/23/49/495101] [PMID]
18. Biavatti MW. Synergy: an old wisdom, a new paradigm for pharmacotherapy. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences 2009; 45(3): 371-8. ## [DOI:10.1590/S1984-82502009000300002]
19. Humphries R, Bobenchik AM, Hindler JA, Schuetz AN. Overview of changes to the clinical and laboratory standards institute performance standards for antimicrobial susceptibility testing, M100. Journal of Clinical Microbiology 2021; 59(12): 10.1128. ## [DOI:10.1128/JCM.00213-21] [PMID] []
20. Gales AC, Reis AO, Jones RN. Contemporary assessment of antimicrobial susceptibility testing methods for polymyxin B and colistin: review of available interpretative criteria and quality control guidelines. Journal of Clinical Microbiology 2001; 39(1): 183-90. ## [DOI:10.1128/JCM.39.1.183-190.2001] [PMID] []
21. Marambio-Jones C, Hoek EM. A review of the antibacterial effects of silver nanomaterials and potential implications for human health and the environment. Journal of Nanoparticle Research 2010; 12(5): 1531-51. ## [DOI:10.1007/s11051-010-9900-y]
22. Arends SR, Butler D, Scangarella-Oman N, Castanheira M, Mendes R. Intermethod comparability analyses of gepotidacin antimicrobial susceptibility tests using a large collection of globally collected Escherichia coli and Staphylococcus saprophyticus clinical isolates. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease 2024: 116181. ## [DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2024.116181] [PMID]
23. Mirzaei F, Salouti M, Shapouri R, Heidari Z. Antimicrobial effect of plant peptide MBP-1 and silver nanoparticles, along with their synergistic effect on skin infection due to Pseudomonas aeruginosa: in vitro and animal model. Pajoohandeh Journal 2013; 18(2): 64-8. ##
24. Xuan G, Lv C, Xu H, Li K, Liu H, Xia Y, Xun L. Sulfane sulfur regulates LasR-mediated quorum sensing and virulence in Pseudomonas aeruginosa PAO1. Antioxidants 2021; 10(9): 1498. ## [DOI:10.3390/antiox10091498] [PMID] []
25. Benkova M, Soukup O, Marek J. Antimicrobial susceptibility testing: currently used methods and devices and the near future in clinical practice. Journal of Applied Microbiology 2020; 129(4): 806-22. ## [DOI:10.1111/jam.14704] [PMID]
26. Burton E, Yakandawala N, LoVetri K, Madhyastha M. A microplate spectrofluorometric assay for bacterial biofilms. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology 2007; 34(1): 1-4. ## [DOI:10.1007/s10295-006-0086-3] [PMID]
27. Colagiorgi A, Festa R, Di Ciccio PA, Gogliettino M, Balestrieri M, Palmieri G, et al. Rapid biofilm eradication of the antimicrobial peptide 1018-K6 against Staphylococcus aureus: A new potential tool to fight bacterial biofilms. Food Control 2020; 107: 106815. ## [DOI:10.1016/j.foodcont.2019.106815]
28. Mohammadzadeh Moghaddam M, Elhamirad A, Shariatifar N, Saidee Asl M, Armin M. Anti-bacterial effects of essential oil of Cardaria draba against bacterial food borne pathogens. The Horizon of Medical Sciences 2014; 19(5): 9-16. ##
29. Dadgar M, Bafroee T, Sadat A, Minaeian S. The effect of antibacterial synergism of silver nanoparticles with extract of Urtica dioica and Allium hirtifolum against multidrug resistant klebsiella (MDR) isolated from ICU patients. Medical Science Journal of Islamic Azad Univesity-Tehran Medical Branch 2019; 29(2): 131-40. ## [DOI:10.29252/iau.29.2.131]
30. Oroojalian F, Orafaee H, Azizi M. Synergistic antibaterial activity of medicinal plants essential oils with biogenic silver nanoparticles. Nanomedicine Journal 2017; 4(4): 237-44. ##
31. Jurado-Martín I, Sainz-Mejías M, McClean S. Pseudomonas aeruginosa: An audacious pathogen with an adaptable arsenal of virulence factors. International Journal of Molecular Sciences 2021; 22(6): 3128. [DOI:10.3390/ijms22063128] [PMID] []
32. Rothenburger S, Spangler D, Bhende S, Burkley D. In vitro antimicrobial evaluation of Coated VICRYL* Plus Antibacterial Suture (coated polyglactin 910 with triclosan) using zone of inhibition assays. Surgical Infections 2002; 3(S1): s79-s87. ## [DOI:10.1089/sur.2002.3.s1-79] [PMID]
33. Bahador A, Saghii H, Ataee R, Esmaeili D. The study of inhibition effects satureja khuzestaniea essence against gene expression bap acinetobacter baumannii with real time PCR technique. Iranian Journal of Medical Microbiology 2015; 9(1): 42-9. ##
34. Henriot CP, Martak D, Genet S, Bornette G, Hocquet D. Origin, fluxes, and reservoirs of Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, and Pseudomonas aeruginosa in aquatic ecosystems of a French floodplain. Science of The Total Environment 2022; 834: 155353. ## [DOI:10.1016/j.scitotenv.2022.155353] [PMID]
35. Rezzoagli C, Granato ET, Kümmerli R. Harnessing bacterial interactions to manage infections: a review on the opportunistic pathogen Pseudomonas aeruginosa as a case example. Journal of Medical Microbiology 2020; 69(2): 147. ## [DOI:10.1099/jmm.0.001134] [PMID] []
36. Bobrov AG, Getnet D, Swierczewski B, Jacobs A, Medina‐Rojas M, Tyner S, et al. Evaluation of Pseudomonas aeruginosa pathogenesis and therapeutics in military‐relevant animal infection models. Apmis 2022; 130(7): 436-57. ## [DOI:10.1111/apm.13119] [PMID]
37. Garcia-Clemente M, de la Rosa D, Máiz L, Girón R, Blanco M, Olveira C, et al. Impact of Pseudomonas aeruginosa infection on patients with chronic inflammatory airway diseases. Journal of Clinical Medicine 2020; 9(12): 3800. ## [DOI:10.3390/jcm9123800] [PMID] []
38. Parkins MD, Somayaji R, Waters VJ. Epidemiology, biology, and impact of clonal Pseudomonas aeruginosa infections in cystic fibrosis. Clinical Microbiology Reviews 2018; 31(4): e00019-18. [DOI:10.1128/CMR.00019-18] [PMID] []
39. Botelho J, Grosso F, Peixe L. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa-Mechanisms, epidemiology and evolution. Drug Resistance Updates 2019; 44: 100640. ## [DOI:10.1016/j.drup.2019.07.002] [PMID]
40. Pang Z, Raudonis R, Glick BR, Lin T-J, Cheng Z. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa: mechanisms and alternative therapeutic strategies. Biotechnology Advances 2019; 37(1): 177-92. ## [DOI:10.1016/j.biotechadv.2018.11.013] [PMID]
41. Vuotto C, Longo F, Donelli G. Probiotics to counteract biofilm-associated infections: promising and conflicting data. International Journal of Oral Science 2014; 6(4): 189-94. ## [DOI:10.1038/ijos.2014.52] [PMID] []
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Azizi M, Bahadur N, Sharifi A. The Effect of Molecular Template Nanopolymer-zinc oxide(Zn) Nanoparticles Impregnated with Khuzestani Essential Oil on lasR Gene Expression in Clinical Isolates of Pseudomonas aeruginosa: a laboratory study. armaghanj 2023; 28 (6) :775-794
URL: http://armaghanj.yums.ac.ir/article-1-3507-fa.html

عزیزی محسن، بهادر نیما، شریفی اصغر. تأثیر نانوپلیمر قالب مولکولی ـ نانوذرات اکسید روی(Zn) آغشته شده به اسانس مرزه خوزستانی بر میزان بیان ژن lasR در جدایه‌های بالینی پسودوموناس آئروژینوزا: یک مطالعه آزمایشگاهی. ارمغان دانش. 1402; 28 (6) :775-794

URL: http://armaghanj.yums.ac.ir/article-1-3507-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 28، شماره 6 - ( 9-1402 ) برگشت به فهرست نسخه ها
ارمغان دانش Armaghane Danesh
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4660